Новый взгляд на процессы формирования отека тканей реципиентного раневого ложа и возможности его оценки с использованием современных инструментальных методов диагностики в эксперименте и клинической практике

Полноценное закрытие обширных раневых дефектов является серьезной проблемой современной хирургии. В значительной части клинических наблюдений у практикующих хирургов возникают трудности при оперативном лечении обширных ран мягких тканей, особенно сущест­ вующих длительное время и не имеющих тенденции к заживлению. Свободная кожная пластика является операцией выбора при закрытии хронических ран, так как она обладает рядом преимуществ перед другими вариантами кожно­пластических вмешательств. При этом от состояния реципиентного ложа в большинстве случаев зависит процент приживления свободного аутодермотрансплантата, степень которого определяется такими взаимовлияющими процессами, как иноскуляция, ангио­ и васкулогенез (регулятор ангиогенеза), протекающими одновременно в самом трансплантате и принимающем раневом ложе. В обзоре представлены исследования отечественных и зарубежных авторов, касающиеся новых возможностей инструментальной оценки состояния реципиентного ложа раны, а именно степени его отека. Показаны Результаты научных работ, указывающих на взаимосвязь между степенью отека раны и результатом ее пластического закрытия. Раскрыты особенности современных методов оптического биоимиджинга при их использовании в определении количества жидкости в ранах мягких тканей как в эксперименте, так и клинической практике.

1. Викторова Е.В. Влияние аллогенных мезенхимальных стволовых клеток на приживление кожного аутотрансплантата расщепленной толщины. Вестник трансплантологии и искусственных органов. 2022;24(Прил.: Материалы XI Всерос. съезда трансплантологов смеждунар. уч.):194.

2. Спиридонов А.А. Жировая ткань как резервный источник пластического материала в лечении хронических ран мягких тканей (обзор литературы). Московский хирургический журнал. 2019;(3):32–39. https://doi.org/10.17238/issn2072-3180.2019.3.32-39

3. Тулупов А.А., Бесчастнов В.В., Погодин И.Е., Широкова И.Ю., Дударева Е.В., Андрюхин К.В., и др. Роль комменсальной кожной микробиоты в процессах репаративной регенерации ран мягких тканей. Вестник экспериментальной и клинической хирургии. 2022;15(2):182–187. https://doi.org/10.18499/2070-478X-2022-15-2-182-187

4. Sen CK, Gordillo GM, Roy S, Kirsner R, Lambert L, Hunt TK, et al. Human skin wounds: a major and snowballing threat to public health and the economy. Wound Repair Regen. 2009;17(6):763–771. PMID: 19903300 https://doi.org/10.1111/j.1524-475X.2009.00543.x

5. Veith AP, Henderson K, Spencer A, Sligar AD, Baker AB. Therapeutic strategies. for enhancing angiogenesis in wound healing. Adv Drug Deliv Rev. 2019;146:97–125. PMID: 30267742 https://doi.org/10.1016/j.addr.2018.09.010

6. Соколов Д.А., Сердюков Д.Ю. Прогрессирование метаболических расстройств и атеросклероза у мужчин молодого возраста с различными метаболическими типами ожирения. Известия Российской военно-медицинской академии. 2022;41(Прил. 2):397–401.

7. Garré C. Über die histologischen Vorgänge bei der Anheilung der Thiersch’schen Transplantationen. Bruns Beitr Klin Chir. 1889;4:625– 652.

8. Laschke MW, Vollmar B, Menger MD. Inosculation: connecting the lifesustaining pipelines. Tissue Eng Part B Rev. 2009;15(4):455–465. PMID: 19552605 https://doi.org/10.1089/ten.TEB.2009.0252

9. Utzinger U, Baggett B, Weiss JA, Hoying JB, Edgar LT. Large-scale time series microscopy of neovessel growth during angiogenesis. Angiogenesis. 2015;18(3):219–32. PMID: 25795217 https://doi.org/10.1007/s10456-015-9461-x

10. Laschke MW, Menger MD. Vascularization in tissue engineering: angiogenesis versus inosculation. Eur Surg Res. 2012;48(2):85–92. PMID: 22456224 https://doi.org/10.1159/000336876

11. Capla JM, Ceradini DJ, Tepper OM, Callaghan MJ, Bhatt KA, Galiano RD, et al. Skin graft vascularization involves precisely regulated regression and replacement of endothelial cells through both angiogenesis and vasculogenesis. Plast Reconstr Surg. 2006;117(3):836–844. PMID: 16525274 https://doi.org/10.1097/01.prs.0000201459.91559.7f

12. Calcagni M, Althaus MK, Knapik AD, Hegland N, Contaldo C, Giovanoli P, et al. In vivo visualization of the origination of skin graft vasculature in a wild-type/GFP crossover model. Microvasc Res. 2011;82(3):237–245. PMID: 21784083 https://doi.org/10.1016/j.mvr.2011.07.003

13. Potente M, Gerhardt H, Carmeliet P. Basic and therapeutic aspects of angiogenesis. Cell. 2011;146(6):873–887. PMID: 21925313 https://doi.org/10.1016/j.cell.2011.08.039

14. Schaser KD, Vollmar B, Menger MD, Schewior L, Kroppenstedt SN, Raschke M, et al. In vivo analysis of microcirculation following closed soft-tissue injury. J Orthop Res. 1999;17(5):678–685. PMID: 10569476 https://doi.org/10.1002/jor.1100170509

15. Hippocrates, Francis A. The Genuine Works of Hippocrates: Translated from the Greek. Vol. 2. London: Printed for the Sydenham society;1849.

16. Avishai E, Yeghiazaryan K, Golubnitschaja O. Impaired wound healing: facts and hypotheses for multi-professional considerations in predictive, preventive and personalised medicine. EPMA J. 2017;8(1):23–33. PMID: 28620441 https://doi.org/10.1007/s13167-017-0081-y eCollection 2017 Mar.

17. Cornu Thenard A, Scuderi A, Ramelet AA, Eklöf B, Flour M, Delis K, et al. UIP 2011 C3 Consensus. Int Angiol. 2012;31(5):414–419. PMID: 22990502

18. Burian EA, Karlsmark T, Franks PJ, Keeley V, Quere I, Moffatt CJ. Cellulitis in chronic oedema of the lower leg: an international crosssectional study. Br J Dermatol. 2021;185(1):110–118. PMID: 33405247 https://doi.org/10.1111/bjd.19803

19. Gniadecka M. Localization of dermal edema in lipodermatosclerosis, lymphedema, and cardiac insufficiency. High-frequency ultrasound examination of intradermal echogenicity. J Am Acad Dermatol. 1996;35(1):37–41. PMID: 8682961 https://doi.org/10.1016/S0190-9622(96)90493-4

20. Chant AD. Hypothesis: why venous oedema causes ulcers and lymphoedema does not. Eur J Vasc Surg. 1992;6(4):427–429. PMID: 1499747 https://doi.org/10.1016/s0950-821x(05)80293-2

21. Литвицкий П.Ф. Нарушения регионарного кровотока и микроциркуляции. Регионарное кровообращение и микроциркуляция. 2020;19(1):82–92. https://doi.org/10.24884/1682-6655-2020-19-1-82-92

22. Schreml S, Szeimies RM, Prantl L, Karrer S, Landthaler M, Babilas P. Oxygen in acute and chronic wound healing. Br J Dermatol. 2010;163(2):257–268. PMID: 20394633 https://doi.org/10.1111/j.1365-2133.2010.09804.x

23. te Slaa A, Dolmans DE, Ho GH, Moll FL, van der Laan L. Pathophysiology and treatment of edema following femoropopliteal bypass surgery. Vascular. 2012;20(6):350–359. PMID: 22983547 https://doi.org/10.1258/vasc.2011.ra0055

24. Haaverstad R, Johnsen H, Saether OD, Myhre HO. Lymph drainage and the development of post-reconstructive leg oedema is not influenced by the type of inguinal incision. A prospective randomised study in patients undergoing femoropopliteal bypass surgery. Eur J Vasc Endovasc Surg. 1995;10(3):316–322. PMID: 7552531 https://doi.org/10.1016/s1078-5884(05)80049-8

25. Simeone FA, Husni EA. The hyperemia of reconstructive arterial surgery. Ann Surg. 1959;150(4):575–585. PMID: 14446825 https://doi.org/10.1097/00000658-195910000-00004

26. Husni EA. The edema of arterial reconstruction. Circulation. 1967;35(Suppl 4):I169–173. PMID: 4953135 https://doi.org/10.1161/01.cir.35.4s1.i-169

27. Soong CV, Young IS, Lightbody JH, Hood JM, Rowlands BJ, Trimble ER, et al. Reduction of free radical generation minimises lower limb swelling following femoropopliteal bypass surgery. Eur J Vasc Surg. 1994;8(4):435–440. PMID: 8088394 https://doi.org/10.1016/s0950-821x(05)80962-4

28. Дедов И.И., Шестакова М.В., Майоров А.Ю. (ред.) Алгоритмы специализированной медицинской помощи больным сахарным диабетом. Клинические рекомендации. 9-й выпуск. Сахарный диабет. 2019;22(1S1):1–144. https://doi.org/10.14341/DM221S1

29. Apelqvist J, Larsson J, Agardh CD. The importance of peripheral pulses, peripheral oedema and local pain for the outcome of diabetic foot ulcers. Diabet Med. 1990;7(7):590–594. PMID: 2146065 https://doi.org/10.1111/j.1464-5491.1990.tb01454.x

30. Wu SC, Crews RT, Skratsky M, Overstreet J, Yalla SV, Winder M, et al. Control of lower extremity edema in patients with diabetes: double blind randomized controlled trial assessing the efficacy of mild compression diabetic socks. Diabetes Res Clin Pract. 2017;127:35–43. PMID: 28315576 https://doi.org/10.1016/j.diabres.2017.02.025

31. Burian EA, Karlsmark T, Nørregaard S, Kirketerp-Møller K, Kirsner RS, Franks PJ, et al. Wounds in chronic leg oedema. Int Wound J. 2022;19(2):411–425. PMID: 34258856 https://doi.org/10.1111/iwj.13642

32. Anwar M, Shalhoub J, Lim C, Gohel M, Davies A. The effect of pressure induced mechanical stretch on vascular wall differential gene expression. J Vasc Res. 2012;49(6):463–478. PMID: 22796658 https://doi.org/10.1159/000339151

33. Raffetto J, Khalil R. Matrix metalloproteinases in venous tissue remodeling and varicose vein formation. Curr Vasc Pharmacol. 2008;6(3):158–172. PMID: 18673156 https://doi.org/10.2174/157016108784911957

34. Bergan J, Schmid-Schönbein G, Smith P, Nicolaides A, Boisseau M, Eklof B. Chronic venous disease. New Engl J Med. 2006;355(5):488–498. PMID: 16885552 https://doi.org/10.1056/nejmra055289

35. Schneider C, Stratman S, Kirsner RS. Lower Extremity Ulcers. Med Clin North Am. 2021;105(4):663–679. PMID: 34059244 https://doi.org/10.1016/j.mcna.2021.04.006

36. Drager LF, Abe JM, Martins MA, Lotufo PA, Bensenor IJ. Impact of clinical experience on quantification of clinical signs at physical examination. J Intern Med. 2003;254(3):257–263. PMID: 12930235 https://doi.org/10.1046/j.1365-2796.2003.01183.x

37. Ramos SM, O’Donnell LS, Knight G. Edema volume, not timing, is the key to success in lymphedema treatment. Am J Surg. 1999;178(4):311–315. PMID: 10587190 https://doi.org/10.1016/s0002-9610(99)00185-3

38. Albers J, Schroeder A, de Simone R, Möckel R, Vahl CF, Hagl S. 3D evaluation of myocardial edema: experimental study on 22 pigs using magnetic resonance and tissue analysis. Thorac Cardiovasc Surg. 2001;49(4):199–203. PMID: 11505314 https://doi.org/10.1055/s-2001-16100

39. Buhmann C, Kretschmann HJ. Computer-assisted three-dimensional reconstruction of the corticospinal system as a reference for CT and MRI. Neuroradiology. 1998;40(9):549–557. PMID: 9808310 https://doi.org/10.1007/s002340050643

40. Ohno M, Kanenishi K, Kuno A, Akiyama M, Yamashiro C, Tanaka H. Three-dimensional sonographic features of nuchal edema. Gynecol Obstet Invest. 2002;53(2):125–128. PMID: 11961389 https://doi.org/10.1159/000053008

41. Gerber LH. A review of measures of lymphedema. Cancer. 1998;83(12 Suppl American):2803–2804. PMID: 9874401 https://doi.org/10.1002/ (sici)1097-0142(19981215)83:12b+<2803::aid-cncr29>3.3.co;2-n

42. Trayes KP, Studdiford JS, Pickle S, Tully AS. Edema: diagnosis and management. Am Fam Physician. 2013;88(2):102–110. PMID: 23939641

43. Brodovicz KG, McNaughton K, Uemura N, Meininger G, Girman CJ, Yale SH. Reliability and feasibility of methods to quantitatively assess peripheral edema. Clin Med Res. 2009;7(1–2):21–31. PMID: 19251582 https://doi.org/10.3121/cmr.2009.819

44. Kirillin MY, Larin KV, Turchin IV, Tuchin V.V. Special Section Guest Editorial: Topical Problems of Biophotonics: from Optical Bioimaging to Clinical Biophotonics. J Biomed Opt. 2018;23(9):1–2. PMID: 30251488 https://doi.org/10.1117/1.JBO.23.9.091401

45. Gurjarpadhye AA, Vogt WC, Liu Y, Rylander CG. Effect of Localized Mechanical Indentation on Skin Water Content Evaluated Using OCT. Int J Biomed Imaging. 2011;2011:817250. PMID: 21837234 https://doi.org/10.1155/2011/817250

46. Landsman AS, Barnhart D, Sowa M. Near-Infrared Spectroscopy Imaging for Assessing Skin and Wound Oxygen Perfusion. Clin Podiatr Med Surg. 2018;35(3):343–355. PMID: 29861017 https://doi.org/10.1016/j.cpm.2018.02.005

47. Perkov SA, Gorin DA, Esenaliev RO. Optoacoustic monitoring of water content in tissue phantoms and human skin. J Biophotonics. 2021;14(3):202000363. PMID: 33205631 https://doi.org/10.1002/jbio.202000363

48. Yakimov BP, Davydov DA, Fadeev VV, Budylin GS, Shirshin EA. Comparative analysis of the methods for quantitative determination of water content in skin from diffuse reflectance spectroscopy data. Kvantovaya Elektronika. 2020;50(1):41–46. https://doi.org/10.1070/QEL17212

49. Choe C, Schleusener J, Choe S, Lademann J, Darvin ME. A modification for the calculation of water depth profiles in oil-treated skin by in vivo confocal Raman microscopy. J Biophotonics. 2020;13(1):e201960106. PMID: 31602797 https://doi.org/10.1002/jbio.201960106

50. Bajwa N, Sung S, Ennis DB, Fishbein MC, Nowroozi BN, Ruan D, et al. Terahertz Imaging of Cutaneous Edema: Correlation with Magnetic Resonance Imaging in Burn Wounds. IEEE Trans Biomed Eng. 2017;64(11):2682–2694. PMID: 28141514 https://doi.org/10.1109/ TBME.2017.2658439